分子的荧光寿命在几纳秒至几百纳秒之间，因此，测量荧光寿命成像需要极快响应时间的探测器。如今主要存在两类方案：一是时域测量，由一束窄脉冲将荧光分子激发至较高能态S1，接着测量荧光的发射几率随时间的变化。典型的时域测量方法有TCSPC和时间门（TG）两种。TCSPC利用快速秒表测量激发脉冲与探测荧光之间的时间差。使用高重复脉冲激发光激发样品，在每一个脉冲周期内，较多激发荧光分子发出一个光子，然后记录光子出现的时刻，并在该时刻记录一个光子，再下一个脉冲周期内也是相同的情况，经过多次计数可以得到荧光光子随时间的分布曲线。相似的，TG则探测不同时间窗口内的荧光强度，通过曲线拟合得到荧光寿命。二是频域测量，对连续激发光进行振幅调制后，分子发出的荧光强度也会受到振幅调制，两个调制信号之间存在与荧光寿命相关的相位差，因此可以测量该相位差计算荧光寿命。荧光寿命显微成像具有高特异性、高灵敏度的优点。杭州显微荧光寿命成像原理
为什么说荧光寿命成像FLIM相比于荧光强度成像更有优势？通过荧光强度成像可以获得荧光分子的空间分布，较为直接和简便，但是当荧光分子具有相似的频谱特性，或是同样的荧光分子在不同环境下时，依赖强度进行成像的方案便无法准确反映信息。与基于光强的成像方式不同，荧光寿命成像FLIM适用于测量荧光分子环境的变化，或是测量分子的运动情况。其结果与荧光分子浓度无关，且不受影响光强的光散射或是光吸收影响，可以精确测量荧光淬灭过程，对生物分子微环境进行定量测量。荧光寿命成像可以用于无法控制局部探针浓度的荧光显微镜中。广东生物荧光寿命成像哪个品牌好荧光寿命检测经典方法为点对点的时间相关单光子计数。
荧光成像技术涉及精确测量已添加到组织中的自然荧光分子或荧光标签的荧光衰减率或寿命。由于寿命取决于分子环境的特性，如温度和pH，以及其与周围分子的相互作用，因此可利用荧光成像技术获得有关分子性质及其微环境的信息。通常，使用激光扫描共聚焦显微镜进行荧光成像技术，通过扫描激光束穿过荧光样品以形成图像，从而实现高分辨率。为了在宏观尺度上获得荧光成像的信息，研究人员开发了一种共焦的宏观系统，该系统结合了激光和非常短的脉冲，利用只有皮秒的长度和非常灵敏的检测器来检测荧光。该系统还包括计算光子的电子器件，并绘制它们相对于激光脉冲和样品上激光束位置的时间分布。
红外荧光寿命成像技术在生物多重检测中的应用。相比于荧光强度，荧光寿命的数值具有很好的稳定性，不依赖于生物组织穿透深度。因此可以实现生物多重成像和量化诊断。该团队利用能量延迟方法并结合对发光离子浓度的调控，实现NIR-II区单一波长下荧光寿命三个量级以上的精确调节。将这种成像方法应用于乳腺的精确诊断，其对标志物的定量检测结果与传统的免疫印迹法和免疫组织化学法相比有很好的一致性。而相比于后两者一次只能对一种标志物进行检测，这种新的时间维度成像方法可以原位实现同时定量多个标记物，并且减少了传统检测方法在组织切片的制作、处理以及评分过程中所导致结果的差异性。荧光寿命成像和生物发光的不同之处是什么？
荧光寿命成像可以干什么？荧光寿命成像图像中每一个像素点在phasor图上都有一个对应的点。因此我们可以获取每个像素点的寿命信息，也可以获知每一寿命所对应的图像区域。荧光寿命成像可以提供荧光强度（光子数）和光子寿命的空间分布，具有200 nm的空间分辨率和皮秒量级的时间分辨率。通过双光子激发（结合飞秒脉冲和共焦显微镜）可以直接检测荧光和时间分辨的荧光寿命。这种无损检测技术，无需解剖或专门制造分层样品，不但可在样品表面，还可在样品表面以下实现深度解析测量。特别适用于新材料、光子学、光伏、光催化、生物材料、纳米材料和纳米复合材料以及其相关的原理探究和设计优化。荧光寿命通常来讲是一定的，不受激发光强度、荧光团浓度等因素的影响。上海动物荧光寿命成像原理
荧光寿命成像和生物发光的不同之处：生物发光与荧光寿命成像产生光子的过程和机制是完全不同的。杭州显微荧光寿命成像原理
荧光寿命成像在生命科学研究中的应用：自发荧光FLIM被普遍应用于非标记生物成像领域。所谓自发荧光，即生物细胞本身便包含荧光分子，称为内源性荧光分子团。FLIM通过对自发荧光分子团（如NAD(P)H）荧光寿命的考察，可以实现细胞代谢的监测。这种方案无需人为对样品加入荧光试剂便可以发射荧光，有效减少了荧光染料对样品的毒性、荧光分子与样品的非特异性结合及染料对生理性能的干扰影响。外源分子探针FLIM借助于外部荧光染料的注入以产生荧光。如今，为了利用FLIM对物理条件（包括粘度、温度、酸度和氧化作用）的敏感性，已经开发出了许多适用于体内和体外应用的光学探针。杭州显微荧光寿命成像原理
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